关键词：荧光定量PCR，实时定量PCR，实验优化，基本参数，探针

荧光定量PCR（qPCR）是一种快速、准确、高灵敏度的分子生物学技术，广泛应用于基因表达分析、病原体检测等领域。然而，在进行实时定量PCR实验时，实验效果不佳的情况经常出现。为了优化PCR实验条件，提高实验效果，我们需要对基本参数进行合理调整，并选择合适的荧光探针。下面将介绍一些优化PCR实验的方法，希望能对相关研究提供一定的帮助。

一、基本参数的优化

1.1 MgCl2的浓度是影响酶活性和反应效果的重要因素。一般而言，对于以DNA或cDNA为模板的PCR反应，应选择2－5 mM的MgCl2浓度；对于以mRNA为模板的RT－PCR反应，选择4－8 mM的浓度。调整MgCl2浓度可以在反应中获得较低的Cp值、较高的荧光信号强度和良好的曲线峰值。

1.2 模板的浓度也是影响实验效果的关键因素。首次实验应选择一系列稀释浓度的模板，以确定最适合的浓度。通常，Cp值应位于15－30个循环之间，若小于15则应选择较低的模板浓度，若大于30则应选择较高的浓度。

二、使用SYBR Green I测定DNA时的条件优化

2.1 MgCl2的浓度一般为2－4 mM，具体浓度可根据实验需要进行调整。

2.2 荧光定量PCR 模板的浓度应在合适的范围内选择，一般为50 ng-5 pg的基因组DNA或106拷贝数左右的质粒DNA。对于低模板浓度，可以加入适量的MS2或alternative RNA作为载体进行测定。

2.3 PCR抑制子也是影响PCR反应效果的重要因素，一般采用稀释样本的方法来消除抑制子的影响。如果抑制子浓度较高而模板量较少，稀释法可能无法完全消除抑制子的影响，此时最好使用纯化的模板。

2.4 引物的浓度是一个关键因素，浓度过低会导致反应不完全，浓度过高则容易产生错配和非特异产物。通常，0.5 uM的引物浓度适用于大多数PCR反应，如果结果不理想，可在0.3－1.0 uM之间调整浓度。

2.5 退火温度的设置也需要注意，一般初次设置的退火温度应比计算得到的Tm值小5 ℃，然后进行1－2 ℃的范围选择。

三、用探针测定DNA的条件优化

3.1 MgCl2的浓度应在2－4 mM的基础上加0.5－1.0 mM，但不要超过2.0 mM。

3.2 探针的浓度一般为0.2 uM，可以根据实验需要适量增加至0.4 uM。

3.3 对照设置很重要，每个引物都应设有阴性对照、阳性对照和污染对照，以确保实验结果的准确性和可重复性。

四、用探针实时定量RT－PCR的条件优化

4.1 MgCl2的浓度应在4－8 mM的范围内选择。

4.2 探针的浓度初次实验一般为0.2 uM，根据荧光信号强度调整至0.4 uM。

4.3 模板浓度的选择同样重要，初次实验应进行一系列稀释浓度的测试，选择合适的浓度范围。对于低浓度的模板，可以加入MS2或alternative RNA作为载体进行测定。

4.4 设置阴性对照、阳性对照和污染对照是确保实验结果准确的重要步骤。

通过合理调整基本参数如MgCl2浓度、模板浓度等，选择合适的探针或SYBR Green I作为荧光探针，可以有效提高PCR实验效果。在实验过程中，合理设置对照以确保实验结果的准确性。针对不同实验种类，在优化PCR实验条件时需要考虑不同的因素。

希望本文介绍的荧光定量PCR 实验优化方案能为科研工作者提供一定的参考和指导。更多分子生物学实验设备、PCR耗材、PCR试剂、DNA电泳槽、电泳仪电源、凝胶成像系统等实验室仪器、实验试剂和实验耗材请进入苏州阿尔法生物实验器材有限公司官网，0512-62956104或18934597460进行了解。